化工学报, 2019, 70(11): 4337-4345 doi: 10.11949/0438-1157.20190278

生物化学工程与技术

尿素和二甲基亚砜诱导DhaA变性的分子动力学模拟

郑禾,1, 杨盛江2, 郑永超1, 崔燕1, 郭旋1, 钟近艺,1, 周健,2

1. 国民核生化灾害防护国家重点实验室,北京 102205

2. 华南理工大学化学与化工学院,广东 广州 510640

Molecular dynamics simulation of denaturation of DhaA induced by urea and dimethyl sulfoxide

ZHENG He,1, YANG Shengjiang2, ZHENG Yongchao1, CUI Yan1, GUO Xuan1, ZHONG Jinyi,1, ZHOU Jian,2

1. State Key Laboratory of NBC Protection for Civilian, Beijing 102205, China

2. School of Chemistry and Chemical Engineering, South China University of Technology, Guangzhou 510640, Guangdong, China

通讯作者: 钟近艺(1975—),女,博士,研究员,linfzjy@163.com周健(1973—),男,博士,教授,jianzhou@scut.edu.cn

收稿日期: 2019-03-22   修回日期: 2019-07-10   网络出版日期: 2019-11-14

基金资助: 国家自然科学基金项目.  21776093

Received: 2019-03-22   Revised: 2019-07-10   Online: 2019-11-14

作者简介 About authors

郑禾(1984—),男,博士研究生,助理研究员,fhyjyzh@126.com , E-mail:fhyjyzh@126.com

摘要

DhaA能够有效降解化学毒剂芥子气,而环境耐受性差影响了其在军事洗消中的应用。虽然已有研究表明定向进化、化学修饰、固定化有利于提高DhaA在尿素、二甲基亚砜(DMSO)溶液中的稳定性,但DhaA在尿素、DMSO下的变性过程尚不清晰。利用分子动力学(MD)模拟方法研究了DhaA在尿素和DMSO两种体系中的变性过程,结果表明尿素分子通过取代水分子与DhaA形成氢键的方式诱导其变性,并且能够与催化位点形成氢键,造成DhaA底物进出口通道长度增加、通道曲率增大、瓶颈尺寸减小;DMSO分子通过范德华作用进入DhaA疏水空腔,从而诱导DhaA变性,使得DhaA通道长度缩短、瓶颈尺寸增大,造成DhaA发生构象变化。该研究结果揭示了DhaA在两种体系中变性过程的区别,能够为DhaA的进一步稳定化提供理论指导。

关键词: 蛋白质变性 ; 尿素 ; 二甲基亚砜 ; 分子动力学模拟

Abstract

DhaA can effectively degrade the chemical poison mustard gas, and poor environmental tolerance affects its application in military decontamination. However, the molecular denaturation processes of DhaA induced by urea and dimethyl sulfoxide (DMSO) remain unclear, although it is reported that directed evolution, chemical modification and immobilization were helpful to the stabilization of DhaA. In this study, molecular dynamics (MD) simulations are used to investigate the denaturation processes of DhaA in urea and DMSO solutions. The results show that urea molecules can replace water to form H-bonds with DhaA and its catalytic active sites, which made main tunnel lengthened, curvature enhanced and bottleneck radius reduced. Whereas DMSO molecules can enter into hydrophobic cavity of DhaA by van der Waals interaction, which made main tunnel shortened, bottleneck radius enlarged and conformation changed. These findings reveal the differences of molecular denaturation process of DhaA in two systems, which could provide theoretical guidance for the stabilization of DhaA.

Keywords: protein denaturation ; urea ; dimethyl sulfoxide ; molecular dynamics simulation

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本文引用格式

郑禾, 杨盛江, 郑永超, 崔燕, 郭旋, 钟近艺, 周健. 尿素和二甲基亚砜诱导DhaA变性的分子动力学模拟[J]. 化工学报, 2019, 70(11): 4337-4345. doi:10.11949/0438-1157.20190278

ZHENG He, YANG Shengjiang, ZHENG Yongchao, CUI Yan, GUO Xuan, ZHONG Jinyi, ZHOU Jian. Molecular dynamics simulation of denaturation of DhaA induced by urea and dimethyl sulfoxide[J]. CIESC Journal, 2019, 70(11): 4337-4345. doi:10.11949/0438-1157.20190278

引 言

DhaA (EC3.8.1.5)属于烷基卤脱卤酶,能够通过催化碳卤键水解从而有效地降解1-氯丁烷、1,3-二氯丙烷、1,2,3-三氯丙烷以及其他含卤农用杀虫剂[1]。2001年,DhaA被报道用于降解化学毒剂芥子气及其模拟剂,迅速成为了国内外化学毒剂洗消领域的研究热点[2,3,4,5,6]。但DhaA在实际应用中稳定性不高,特别是在尿素、DMSO等变性剂影响下易丧失催化反应能力[7]。随后定向进化、化学修饰、固定化等多种手段均被报道用来提高DhaA的稳定性。Damborsky课题组[8]通过定向进化手段得到了突变体DhaA106,在40%DMSO溶液中的稳定性提高了10倍;Zhao等[9]通过PEG修饰将DhaA在40%DMSO中的催化活性提高了30%。Zheng等[10]通过氨基化介孔泡沫固定化的方式稳定化DhaA,将3 mol/L尿素溶液中放置1 h后的DhaA活性残留率从46.1%提高到71.3%,40%DMSO中放置5 h后的DhaA活性残留率从45.4%提高到85.7%。上述研究虽然能够提高DhaA的稳定性,但对DhaA在尿素和DMSO溶液中的变性过程并未进行探讨,而理解DhaA的变性过程有助于解释其稳定化机理,并为DhaA的进一步稳定化提供指导。前期开展了DhaA在尿素、DMSO溶液中变性过程的荧光光谱研究,发现DhaA在两种变性体系中的变性过程存在明显区别[11]。但由于DhaA变性过程非常迅速,实验技术很难获得DhaA的结构变化信息,无法从原子和分子角度解释其变性过程的差异。

分子动力学(MD)模拟能够利用计算机构建的分子模型模拟蛋白的微观结构和动态行为,目前已经广泛用于蛋白质折叠和去折叠过程研究,MD模拟具有更高维度的动力学和更高分辨率的结构分析能力,逐渐成为了微观层面研究蛋白变性机理的重要工具[12,13,14,15,16,17,18]。Roccatano等[19]在纯水和DMSO水溶液对细胞色素P450 BM-3进行了MD模拟,发现14% DMSO溶液中BM-3的底物进出口通道出现较大变化,DMSO分子出现在底物结合位点附近,导致BM-3变性。Li等[20]采用MD模拟了谷胱甘肽S转移酶在不同温度尿素溶液中的变性过程。Khan等[21]采用实验方法和MD模拟相结合的方式研究了细胞色素c在尿素和盐酸胍中的变性过程,发现在盐酸胍诱导下细胞色素c的变性过程中存在折叠态、去折叠态以外的中间态。沈洪辰等[22]通过MD模拟了蛋白p35突变体p35C的构象变化,对突变后结构稳定性增强的机理进行了分析。卢滇楠等[23,24]和潘晓莉等[25]同样采用MD模拟,分别研究了表面活性剂、二硫键以及离子液体对蛋白质稳定性的影响。

本文以DhaA为研究对象,采用全原子MD模拟方法,考察了DhaA在尿素和DMSO溶液中的变性情况,通过分析DhaA的结构变化和其与溶剂分子的相互作用,研究DhaA在两种体系中的变性过程。

1 模型和方法

1.1 模拟模型

DhaA的初始结构从蛋白数据库(www.rcsb.org)中获得,PDB代码为4e46。包含293个氨基酸残基,由10个α-螺旋、8个β-折叠组成。其活性位点为典型的催化三联体天冬氨酸Asp106-谷氨酸Glu130-组氨酸His272,并且Asn41和Trp107也与催化活性密切相关,结构如图1所示。尿素和DMSO的力场参数取自CHARMM36力场。所有模拟体系均采用Gromacs 4.5.7[26]软件包完成。

图1

图1   DhaA的三维晶体结构(红色珠子代表活性位点)

Fig.1   Native three dimensional structure of DhaA(red beads represent catalytic sites)


1.2 模拟方法

模拟盒子的尺寸为8 nm×8 nm×8 nm,水分子模型采用TIP3P模型。DhaA的所有酸性残基(包括谷氨酸和天冬氨酸)和C-端残基均进行去质子化处理,而所有碱性残基(包括赖氨酸和精氨酸)以及N-端残基均进行质子化处理。DhaA带有-17单位净电荷。为了保持体系呈电中性,体系中加入相应的反号离子(Na+),在xyz三个方向施加周期性边界条件。在MD模拟之前,采用最陡下降法对体系进行能量最小化处理,以消除体系中不合理的原子空间位置重叠或者不适当的几何结构。之后在NVT条件下模拟运行100 ps进行温度预平衡,再在NPT条件下模拟100 ps进行压力预平衡,模拟步长为2 fs。温度控制采用Nose-Hoover恒温器,时间常数为0.5 ps。压力控制采用Parrinello-Rahman恒压器,时间常数为2 ps。体系的模拟温度为298 K,压力为1×105 Pa。体系中所有包含氢原子的化学键都用LINCS算法限制,非键相互作用截断半径为1.0 nm,静电作用的计算使用PME方法,范德华作用的计算采用switch方法,在0.9~1.0 nm之间势能平滑地过渡到0。最后所有的体系都在NPT系综中进行MD模拟,所有体系的模拟时间均为1000 ns。模拟体系为5.6 mol/L 尿素和DMSO溶液(加入1500个尿素或DMSO分子),纯水溶液作为对照。所有MD模拟计算均在华南理工大学高性能网格计算中心SCUTGrid服务器 (含20 个节点的8 核Intel Xeon E-2670 CPU和64G 内存)上完成。

2 实验结果与讨论

2.1 DhaA结构分析

DhaA主链结构的均方根偏差(root-mean-square deviation,RMSD)表示了DhaA变性过程中结构变化的最小均方根偏差,能够定量地表征DhaA结构变化大小。图2为DhaA在水溶液、5.6 mol/L尿素及DMSO三种体系中蛋白骨架的RMSD值。可以看到,由于DhaA的结构稳定性不高,在纯水模拟体系中存在一定程度的结构变化,RMSD平均值为(0.17±0.03) nm。DhaA在5.6 mol/L 尿素体系模拟过程中,RMSD值在431 ns左右出现较大波动,峰值达到0.5 nm,而RMSD的平均值为(0.21±0.03) nm。DMSO同样会造成DhaA的结构发生波动,在5.6 mol/L DMSO溶液中DhaA的RMSD值在887 ns达到0.4 nm左右,RMSD平均值为(0.20±0.04) nm。比较三种体系中DhaA的RMSD值可以看到,DhaA在尿素和DMSO中的结构变化程度高于纯水溶液中的,相对变化提高17.6%~23.5%。说明尿素和DMSO两种有机小分子均会诱导DhaA发生一定程度的结构变化。

图2

图2   DhaA在不同模拟体系中的RMSD随时间变化

Fig.2   RMSD evolutions of DhaA as a function of time in different simulation systems


图3(a)~(c)显示的是不同模拟体系中,DhaA二级结构之间发生相互转换的动态过程(DSSP)。在整个MD模拟过程中,DhaA的主要二级结构(α-螺旋和β-折叠)几乎没有发生变化,说明DhaA在三种体系在1000 ns模拟过程中二级结构整体保持稳定。

图3

图3   DhaA在不同模拟体系中的二级结构变化

Fig.3   Secondary structure evolutions of DhaA as a function of time in different simulation systems


赵渊中[27]研究发现DhaA的催化活性受其底物进出口通道结构影响很大,通过定点突变缩短通道长度、减小通道曲率、增大瓶颈尺寸都能够增加DhaA的催化活性。为此考察了DhaA在三种模拟体系下的底物进出口通道,并通过Caver Analyst软件[28]对其主通道(蓝色通道)结构进行了分析,结果如图4表1所示。

图4

图4   DhaA在不同模拟体系中的通道示意图

Fig.4   Snapshots of tunnel of DhaA in different simulation systems


表1   DhaA在不同变性条件下的主通道结构参数

Table 1  Main tunnel parameters of DhaA in different simulation systems

DhaA模拟体系通道长度/Å通道曲率瓶颈尺寸/Å通过成本
纯水12.551.251.160.45
尿素22.481.451.100.54
DMSO10.271.271.260.19

注:1 Å =0.1 nm。

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图4(a)~(c)可以看到,DhaA在纯水体系中仅存在1条底物进出口通道,当模拟体系中加入尿素或DMSO分子后,底物进出口通道发生明显变化。在尿素体系中,DhaA的底物进出口通道增加到6条,而在DMSO体系中,底物进出口通道也增加为5条。与此同时,底物进出主通道的结构参数也发生了较大改变。在纯水体系中,DhaA的主通道长度12.55 Å(1 Å=0.1 nm,后同),曲率1.25,通道的瓶颈尺寸为1.16 Å,此时底物在该通道中的通过成本为0.45。当体系中加入尿素分子后,由于尿素分子与DhaA的相互作用,导致DhaA的结构发生变化,主通道长度从12.55 Å增加到22.48 Å,通道曲率也从1.25增加到1.45,瓶颈尺寸从1.16 Å减小到1.10 Å,底物在主通道中的运动受限,通过成本增加为0.54。在DMSO体系中,由于DMSO的作用影响,主通道长度缩短(10.27 Å)、瓶颈尺寸增大(1.26 Å),通道曲率基本得到保持。上述结构变化有利于催化过程中的底物传输,造成底物通过成本降低为0.19。因此可以推测,与尿素分子结合后,DhaA通道结构变得更加紧密,底物通过难度增加;而与DMSO分子结合后,DhaA通道结构变得松散,底物很容易进出,这是尿素、DMSO两种分子与DhaA作用方式不同造成的。

2.2 有机小分子与DhaA作用分析

通过分析DhaA在不同体系中氢键(设定给体和受体之间的距离截断值为3.5 Å,给体-供体-氢原子之间的角度截断值为30°)数目的变化,可以比较尿素和DMSO分子对DhaA变性过程的影响。如图5所示,在纯水溶液中,DhaA蛋白内存在200个左右氢键,蛋白与水分子的氢键数量在600个左右。当体系中存在尿素分子时,DhaA与水分子的氢键减少到500个左右,缺少的氢键由DhaA与尿素分子形成的氢键进行了补充,体系氢键总数增加。说明尿素分子形成氢键的能力高于水分子,尿素分子能够取代DhaA周围的水分子,通过氢键与DhaA结合。

图5

图5   DhaA在不同模拟体系中的氢键数(蓝色表示DhaA与水分子氢键,红色表示DhaA与有机分子氢键,黑色表示DhaA分子内氢键)

Fig.5   Numbers of H-bonds in DhaA in simulation systems

(blue bar represents H-bond between DhaA and water molecules, red bar represents H-bond between DhaA and organic molecules, black bar represents intramolecular H-bond of DhaA molecules)


在DMSO体系中,DhaA分子内氢键与纯水溶液中一致,DhaA与水分子形成的氢键数目仍然减少至500个左右,但DhaA与DMSO分子仅仅形成了20个氢键,体系氢键总数减少。说明DMSO分子与DhaA形成氢键的能力不强,氢键总数的减少和DMSO体系中DhaA的构象变化有关。

DhaA的催化活性中心位于疏水空腔内,在DhaA变性过程中,有机小分子可以进入疏水空腔与活性位点结合,从而导致DhaA活性衰减和构象变化。不同体系中,距离催化活性位点3.5 Å范围内的溶剂分子分布如图6所示。

图6

图6   DhaA在不同模拟体系中的催化位点3.5 Å内溶剂分子分布(蓝色珠子代表水分子,红色珠子代表尿素分子,绿色珠子代表DMSO分子)

Fig.6   Snapshots of solution molecules distribution within 3.5 Å around catalytic sites in DhaA in different simulation systems

(blue beads represent water molecules, red beads represent urea molecules, green beads represent DMSO molecules)


在纯水体系1000 ns模拟后,与DhaA催化活性位点(Asn41、Asp106、Trp107、Glu130、His272)距离3.5 Å内能够形成氢键的水分子共有17个[图6(a)]。当体系中加入尿素分子时[图6(b)],部分尿素分子进入DhaA疏水空腔,空腔内水分子残留15个,尿素分子6个。当模拟体系为5.6 mol/L DMSO时[图6(c)],DhaA疏水空腔内水分子减少到10个,并且存在4个DMSO分子。图7对比了三种体系中溶剂分子质心相对于DhaA催化位点质心的径向分布函数(RDF)。

图7

图7   DhaA催化位点附近溶剂分子的径向分布函数

Fig.7   Radial distribution functions (RDFs) of solvent molecules around catalytic sites


DhaA催化位点附近溶剂分子的分布主要集中在0~1.2 nm和2~3.5 nm两个区域,其中0~1.2 nm区域的分布比较典型。在纯水体系中[图7(a)],0.4 nm处存在一个很突出的尖峰,此处水分子通过氢键作用与催化位点结合,同样在0.6 nm处也存在一个小峰。图7(b)描述了5.6 mol/L尿素体系中尿素分子和水分子在DhaA催化位点附近的分布。可以看到,体系中尿素分子跟水分子的分布情况相似,说明溶液中尿素分子能被水分子很好溶解。虽然0.4 nm处的水分子分布与纯水体系中相差不大,但开始出现部分尿素分子,而0.6 nm处尿素分子的分布函数高于水分子,说明尿素分子进入DhaA催化位点附近,并且开始取代附近的水分子。在图7(c)所示的5.6 mol/L DMSO体系中,0.4 nm处水分子分布得到增强,说明DMSO加入后无法通过氢键作用结合催化位点,反而增强了水分子与催化位点之间的氢键作用。但在催化位点附近0.6 nm处以及水分子分布较少0.8 nm处,DMSO分布逐渐增多,此处分布有DhaA的疏水氨基酸,DMSO能够通过范德华作用稳定存在。

尿素和DMSO分子与催化位点的相互作用,同样可以通过研究三种模拟体系中DhaA催化位点的结构变化来进行验证。对比DhaA在纯水和5.6 mol/L尿素体系中的局部结构[图8(a)],可以发现,由于尿素分子与各催化残基之间存在氢键作用,导致催化位点Asn41、Asp106、Trp107、Glu130和His272均发生了明显的位置变化。而在5.6 mol/L DMSO体系中,DMSO分子只能与非极性的Trp107发生范德华作用,造成Asp106-Trp107结构发生位移,其他催化位点结构没有明显变化。

图8

图8   DhaA在模拟体系中催化位点的结构变化(蓝色为纯水体系中的DhaA,红色为尿素体系中的DhaA,橙色为DMSO体系中的DhaA)

Fig.8   Structural change of catalytic sites of DhaA in different simulation systems(blue part represents DhaA in water, red part represents DhaA in urea solution, orange part represents DhaA in DMSO solution)


2.3 DhaA变性过程分析

通过前面分析可知,在DhaA变性过程中,尿素分子能够通过氢键作用取代DhaA外层的水分子,从而在DhaA分子周围富集,并且能够进入DhaA催化位点附近,与催化位点形成氢键。大量尿素分子与DhaA的相互作用造成DhaA底物进出口通道的通道长度增加、瓶颈尺寸减小,导致DhaA变性。DMSO诱导DhaA变性过程中,DMSO分子无法取代水分子与DhaA形成氢键,但部分DMSO分子能够通过范德华作用进入DhaA疏水空腔,造成其疏水结构暴露,引起DhaA底物进出口通道长度缩短、瓶颈尺寸增加,诱导DhaA发生变性。

为分析DhaA变性过程中的构象变化,结合蛋白质的均方根偏差RMSD和回转半径Rg得到了自由能形貌图,用以衡量蛋白质构象的分布概率和范围[14,29]。DhaA在不同模拟体系中的自由能形貌如图9所示,红色区域表示能量低,蓝色区域表示能量高。在纯水体系中,DhaA的稳定构象集中于折叠态(F),但因为DhaA稳定性差,同样存在结构扰动[图9(a)]。

图9

图9   DhaA在不同模拟体系中的自由能形貌图(F表示折叠态)

Fig.9   Gibbs free energies landscapes of DhaA in different simulation systems (F indicated folding state)


5.6 mol/L尿素体系中[图9(b)],由于尿素分子的结合作用,DhaA构象变化的分布范围变大,但大部分构象集中于折叠态(F),折叠态分布拓宽。在5.6 mol/L DMSO体系中[图9(c)]虽然DMSO分子无法取代水分子与DhaA结合,但部分DMSO分子进入DhaA疏水空腔,造成DhaA构象分散更广泛。与此同时,构象分布中存在两个能量最低点,证明DhaA在DMSO诱导变性过程中存在其他稳定构象(去折叠态或中间态)。

3 结 论

本文通过MD模拟研究了DhaA在尿素和DMSO两种溶液体系中的变性过程。模拟结果显示,虽然DhaA在三种体系中RMSD和DSSP变化不大,但底物进出口通道结构变化明显。在5.6 mol/L尿素体系中,尿素分子能够取代DhaA周围水分子,造成DhaA主通道长度增加、通道曲率增大、瓶颈尺寸减小,底物进出难度增加;而在5.6 mol/L DMSO体系中,DMSO分子进入疏水空腔,诱导DhaA发生构象变化,使得通道长度缩短、瓶颈尺寸增大,底物更容易进出。与此同时,溶剂分子的径向分布函数证实,尿素分子能够进入DhaA催化位点附近,并通过氢键作用与位点结合,而DMSO仅能通过范德华作用稳定存在于DhaA催化位点附近。自由能形貌图表明,由于DMSO造成DhaA构象变化,导致其构象分布更广,并且存在其他稳定构象。DMSO体系中其他稳定构象的验证和鉴定,需要采用分子动力学模拟结合实验进一步研究。掌握DhaA的上述变性过程有助于深入研究各种稳定化手段的作用机理,为DhaA稳定性的进一步提高提供理论指导。

参考文献

KoudelakovaT, BidmanovaS, DvorakP, et al.

Haloalkane dehalogenases: biotechnological applications

[J]. Biotechnol. J., 2013, 8: 32-45.

[本文引用: 1]

NagataY, OhtsuboY, TsudaM.

Properties and biotechnological applications of natural and engineered haloalkane dehalogenases

[J]. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2015, 99: 9865-9881.

[本文引用: 1]

HarveyP S.

Enzymatic degradation of HD

[R]. USA: Edgewood Chemical Biological Center, 2002.

[本文引用: 1]

BidmanovaS, SteinerM S, StepanM, et al.

Enzyme-based test strips for visual or photographic detection and quantitation of gaseous sulfur mustard

[J]. J. Anal. Chem., 2016, 88: 6044-6049.

[本文引用: 1]

郭楠, 董亮, 刘景全, .

烷基卤去卤化酶对芥子气的催化水解

[J]. 环境化学, 2015, 34: 1363-1370.

[本文引用: 1]

GuoN, DongL, LiuJ Q, et al.

Catalytic hydrolysis of sulfur mustard by haloalkane dehalogenases

[J]. Environ. Chem., 2015, 34: 1363-1370.

[本文引用: 1]

赵渊中, 钟近艺, 郭楠, .

多点突变提高DhaA对芥子气的活性和热稳定性

[J]. 应用与环境生物学报, 2017, 23: 714-718.

[本文引用: 1]

ZhaoY Z, ZhongJ Y, GuoN, et al.

Improvement in the thermostability and activity of DhaA against sulfur mustard by multipoint mutagenesis

[J]. Chin. J. Appl. Environ. Biol., 2017, 23: 714-718.

[本文引用: 1]

StepankovaV, DamborskyJ, ChaloupkovaR.

Organic co-solvents affect activity, stability and enantioselectivity of haloalkane dehalogenases

[J]. Biotechnol. J., 2013, 8: 719-729.

[本文引用: 1]

LiskovaV, BednarD, PrudnikovaT, et al.

Balancing the stability-activity trade-off by fine-tuning dehalogenase access tunnels

[J]. ChemCatChem, 2015, 7: 648-659.

[本文引用: 1]

ZhaoY Z, YuW L, ZhengH, et al.

PEGylation with the thiosuccinimido butylamine linker significantly increases the stability of haloalkane dehalogenase DhaA

[J]. J. Biotechnol., 2017, 254: 25-33.

[本文引用: 1]

ZhengH, ZhongJ Y, CuiY, et al.

Mesoporous support designed for DhaA adsorption with improved stability

[J]. J. Porous. Mat., 2019, 26(3): 829-837.

[本文引用: 1]

郑禾, 钟近艺, 崔燕, .

荧光光谱法研究氨基改性介孔泡沫对DhaA的稳定化机理

[J]. 光谱学与光谱分析, 2019, 39: 1776-1784.

[本文引用: 1]

ZhengH, ZhongJ Y, CuiY, et al.

Stabilization mechanism of amino-mesocellular foam to DhaA by fluorescence spectroscopic method

[J]. Spectrosc. Spect. Anal., 2019, 39: 1776-1784.

[本文引用: 1]

DaggettV.

Molecular dynamics simulations of the protein unfolding/folding reaction

[J]. Acc. Chem. Res., 2002, 35: 422-429.

[本文引用: 1]

TretyakovaT, ShushanyanM, PartskhaladzeT, et al.

Simplicity within the complexity: bilateral impact of DMSO on the functional and unfolding patterns of α-chymotrypsin

[J]. Biophys. Chem., 2013, 175/176: 17-27.

[本文引用: 1]

KhanS H, PrakashA, PandeyP, et al.

Protein folding: molecular dynamics simulations and in vitro studies for probing mechanism of urea- and guanidinium chloride induced unfolding of horse cytochrome-c

[J]. Int. J. Biol. Macromol., 2019, 122: 695-704.

[本文引用: 2]

YamadaT, MitakuS, YamatoT.

Characterization of mechanical unfolding intermediates of membrane proteins by coarse grained molecular dynamics simulation

[J]. Chem. Phys. Lett., 2018, 691: 276-282.

[本文引用: 1]

CanchiD R, GarciaA E.

Cosolvent effects on protein stability

[J]. Annu. Rev. Phys. Chem., 2013, 64: 273-293.

[本文引用: 1]

廖晨伊, 周健.

β发卡多肽Trpzip4折叠的副本交换分子动力学模拟

[J]. 化学学报, 2013, 71: 593-601.

[本文引用: 1]

LiaoC Y, ZhouJ.

Replica exchange molecular dynamics simulations on the folding of Trpzip4 β-hairpin

[J]. Acta Chim. Sinica, 2013, 71: 593-601.

[本文引用: 1]

曹了然, 张春煜, 张鼎林, .

分子动力学模拟技术在生物分子研究中的进展

[J]. 物理化学学报, 2017, 33: 1354-1365.

[本文引用: 1]

CaoL R, ZhangC Y, ZhangD L, et al.

Recent developments in using molecular dynamics simulation techniques to study biomolecules

[J]. Acta Physico-Chimica Sinica, 2017, 33: 1354-1365.

[本文引用: 1]

RoccatanoD, WongT S, SchwanebergU, et al.

Structural and dynamic properties of cytochrome P450 BM-3 in pure water and in a dimethylsulfoxide/water mixture

[J]. Biopolymers, 2005, 78: 259-267.

[本文引用: 1]

LiJ H, ChenY, YangJ, et al.

Thermal and urea induced unfolding processes of glutathione S-transferase by molecular dynamics simulation

[J]. Biopolymers, 2015, 103: 247-259.

[本文引用: 1]

KhanP, PrakashA, HaqueM A, et al.

Structural basis of urea-induced unfolding: unraveling the folding pathway of hemochromatosis factor E

[J]. Int. J. Biol. Macromol., 2016, 91: 1051-1061.

[本文引用: 1]

沈洪辰, 丁吉勇, 李丽, .

Y220C突变体影响p53C蛋白质构象转换的分子动力学模拟

[J]. 物理化学学报, 2016, 32: 2620-2627.

[本文引用: 1]

ShenH C, DingJ Y, LiL, et al.

Effect of Y220C mutant on the conformational transition of p53C probed by molecular dynamics simulation

[J]. Acta Physico-Chimica Sinica, 2016, 32: 2620-2627.

[本文引用: 1]

卢滇楠, 闫明, 张敏莲, .

蛋白质-表面活性剂组装结构的分子模拟

[J]. 化工学报, 2006, 57(8): 1949-1956.

[本文引用: 1]

LuD N, YanM, ZhangM L, et al.

Molecular simulation of protein-surfactant assembly in aqueous solution

[J]. Journal of Chemical Industry and Engineering(China), 2006, 57(8): 1949-1956.

[本文引用: 1]

杨程, 卢滇楠, 张敏莲, .

分子动力学模拟二硫键对胰岛素构象稳定性的影响

[J]. 化工学报, 2010, 61(4): 929-934.

[本文引用: 1]

YangC, LuD N, ZhangM L, et al.

Molecular dynamics simulation of impact of disulfide bridge on conformational stability of insulin

[J]. CIESC Journal, 2010, 61(4): 929-934.

[本文引用: 1]

潘晓莉, 李代禧, 魏冬青.

胰岛素活性结构在水合离子液体中的稳定性

[J]. 化工学报, 2017, 68(5): 2035-2041.

[本文引用: 1]

PanX L, LiD X, WeiD Q.

Bioactive structural stability of insulin in hydrated ionic liquids

[J]. CIESC Journal, 2017, 68(5): 2035-2041.

[本文引用: 1]

HessB, KutznerC, van de SpoelD, et al.

GROMACS 4:  algorithms for highly efficient, load-balanced, and scalable molecular simulation

[J]. J. Chem. Theory Comput., 2008, 4: 435-447.

[本文引用: 1]

赵渊中.

脱卤酶对芥子气的催化活性和稳定性研究

[D]. 北京: 防化研究院, 2016.

[本文引用: 1]

ZhaoY Z.

Study on the activity and stability of dehalogenase against sulfur mustard

[D]. Beijing: Research Institute of Chemical Defense, 2016.

[本文引用: 1]

JurcikA, BednarD, ByskaJ, et al.

CAVER Analyst 2.0: analysis and visualization of channels and tunnels in protein structures and molecular dynamics trajectories

[J]. Bioinfomatics, 2018, 34: 3586-3588.

[本文引用: 1]

AmreshP, GunjanD, NaveenK M, et al.

Elucidation of stable intermediates in urea induced unfolding pathway of human carbonic anhydrase Ⅸ

[J]. J. Biomol. Struct. Dtn., 2017, 36: 2391-2406.

[本文引用: 1]

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